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March 20, 2025
(H3)
I tubi a vuoto si basano suPrincipio di Bernoulli- egradienti di pressioneIl tubo pre-evacuato crea unpressione negativaIl flusso sanguigno viene calcolato in base alla pressione venosa (515 mmHg).Q.segueEquazione di Hagen-Poiseuille:
Q.=8nLπΔPr4- Sì.
Dove?ΔP= gradiente di pressione,r= raggio dell'ago,n= viscosità del sangue (~3 ‰ 4 mPa·s), eL= lunghezza dell' ago.
Un'intuizione fondamentale: dimensioni più piccole dell' ago (ad es. 21G vs. 23G) riduconor, riducendo le portate ma riducendo al minimo il rischio di emolisi.
Vetro: chimicamente inerte, ideale per la prova di oligoelementi (senza lisciviazione).
Plastico (PET): resistente alle fratture, più leggero, ma può richiedere rivestimenti in silicone per ridurre l'adesione delle cellule.
I gel polimerici (ad es. a base di poliestere) presentano unadensitàdi 1,04·1,08 g/cm3, intermedio tra siero (1,02 g/cm3) e cellule (1,08·1,10 g/cm3). Durante la centrifugazione (1,200·2,000 RCF), il gel migra per formare una barriera,impedendo al metabolismo cellulare di alterare gli analiti.
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Additivo | Meccanismo | Utilizzo di esempi |
---|---|---|
EDTA | Chelati Ca2+ → inibiscono la cascata di coagulazione | CBC (conservazione della morfologia cellulare) |
Citrato di sodio | Leghi Ca2+ → impedisce la conversione del fibrinogeno → della fibrina | Studi di coagulazione (PT/APTT) |
Heparina | Attiva l' antitrombina III → inibisce la trombina | Elettroliti plasmatici (K+, Na+) |
Nota tecnica: il rapporto stochiometrico dell'EDTA è di 1,5-2,2 mg/ml di sangue.
Le particelle di silice nei tubi rossi si attivanoFattore Hageman (FXII)L'ottimizzazione dell'area superficiale (~ 300 m2/g) garantisce una rapida formazione di coaguli (20-30 min).
(H3)
Fabbricazione a partire da:: tubi di separazione del siero (SST) per la rilevazione di IgG/IgM.
Sfida: Interferenza del gel nell'ELISA → risolta mediante ultracentrifugamento (10.000 RCF, 10 minuti).
Dati: sensibilità migliorata da 85% → 94% (J.Clin. Microbiologia., 2023).
Biopsie liquide:
Fabbricazione a partire da:: tubi di DNA privi di cellule (Streck) con fissanti proprietari.
FisicaStabilizza le nucleasi attraversochelatori(EDTA) eregolatori osmoticiper prevenire la frammentazione del DNA.
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Regolamenta le dimensioni del tubo, gli additivi e l'etichettatura.
Tolleranza di volume: ± 10% per tubi < 10 ml.
Limite di emolisi: emoglobina libera < 0,5 g/l (spettrofotometria a 540 nm).
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Figura 1: Pressione contro volume di prelievo di sangue nei tubi a vuoto
(Incorporazione di un grafico interattivo che confronta le prestazioni dell' ago 21G vs 23G)
Figura 2: Efficienza del separatore di gel per velocità di centrifugazione
(Grafico a barre che mostra il rendimento del plasma privo di cellule a 1.000 vs. 2.000 RCF)
(H3)
A: Per mantenereforza ionicaPer una misurazione accurata del fattore di coagulazione, il riempimento insufficiente dilui i fattori → PT/APTT falsamente prolungati.
R: I plastificanti (ad esempio i ftalati) nei tubi in PET possono lisciare Zn2+ → utilizzare tubi certificati privi di oligoelementi.
(H4)
Emolisi: Rottura dei globuli rossi a causa di stress da taglio o squilibrio osmotico.
Ordine del sorteggio: Sequenza per evitare la contaminazione incrociata (ad esempio, citrato prima dell'EDTA).
SST: tubo di separazione del siero (barriera gel).
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Problemi: perdita di vuoto variabile nelle regioni ad alta quota (ad esempio, nelle Ande).
Soluzione: tubi con tappi rinforzati (CLSI H21-A5).
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CLSI H3-A6: Procedure di raccolta del sangue.
Chimica clinica(2023): interferenze additive nella spettrometria di massa.
Linee guida dell'OMS: conservazione in tubo a 4 ̊25°C, evitare il congelamento.
Suggerimento di elementi interattivi:
Glossario di suggerimenti: Passate il mouse su termini come RCF per vedere le definizioni.
Quiz: Mettete alla prova le vostre conoscenze sugli additivi per tubi!
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